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正常人:CD55、CD59:阳性;
FLAER:阳性。
阵发性睡北性血红蛋自尿症( paroxysmal nocturnal hemoglobinuria,PNH)是一种后天获得性、造血干细胞基因突变面引起的溶血性疾病,该疾病是由于PIGA基因突变,导致连接细胞膜的糖磷脂酰肌醇(glycophosphatidylinositol,GPI)相关锚蛋白缺失,红细胞表面缺乏补体调节蛋白如CD55、CD59而对补体敏感,介导血管内溶血的发生,出现血红蛋白尿。
在疾病的发展过程中,PNH有三个显著的临床特点,首先,以补体介导的血管内溶血为主要临床表现;其次,具有形成血栓的倾向,该血栓不仅可发生在四肢,还好发于特殊部位,如肝门( Budd- Chiari综合征)、脾、肠系膜静脉;另外有发展骨髓造血功能衰竭的潜在风险。所有患者当疾病发展到一定程度或是在疾病发展的终末期,表现为免疫介导的严重的再生障碍性贫血。要注意的是,患者临床表现的个体差异很大,不是每例PNH患者在就诊时都会出现这三个临床表现。
PNH克隆流式细胞术检测方案
1、红细胞表面CD5和CD59分子表达检测
红细胞膜CD5和CD59的缺失,被认为是引起PNH病理生理的主要原因。红细胞CD5和CD59分子表达检测就是明确鉴定和定量GPI相关锚蛋白缺失数(Ⅲ型细胞),与正常细胞区别(Ⅰ型细胞),或者部分缺失(Ⅱ型细胞);同时比较红细胞FNH克降数和白细胞PNH克隆数,可以给临床提供更多信息。要注意的是,由于患者可能存在溶血和输血等因素的影响,单纯检测红细表面GPI锚蛋白的缺失并不能对PNH做出准确判断。
2、白细胞表面CD55和CD59分子表达检测
白细胞是检测PNH克隆大小的最好目标细胞,但是淋巴细胞不适合做PNH克隆检测,因为淋巴细胞寿命长,GP相关锚蛋白表达变异性很大。单核细胞和粒细胞都是非常好的可用于PNH克隆检测的靶细胞,一般来说这两种细胞检测出的克隆数目是一致的。分析两种细胞群可以更好地作出诊断。
对于PNH克隆大的病例,可以用一个GPI锚蛋白抗体如CD55或者CD59抗体、以直方图参数就可以体现阴阳性细胞群。但对于PNH克隆数量少的病例,需要收集更多的细胞,并需要用到2个不同的标志去找阴性目标细胞群。粒细胞GPI锚蛋白检测有很多抗体,一般多用CD16、CD24和CD66b。
3、白细胞的FLAER法测定
以往都认为CD55和CD59是检测白细胞最好的抗体,但是与其他GPI锚蛋白抗体相比,它们有时候不容易区分阴、阳性细胞群,并且检测出的PNH克隆的能力有限。越来越多的数据表明:目前检测白细胞GPI相关锚蛋白缺失最好的试剂是荧光标记的气单胞菌溶素(aerolysin或FLAER)。
气单胞菌溶素( aerolysin)是一种细菌毒素,具有与细胞表面GPI结合、最终引起细胞裂解的能力。PNH细胞克隆缺乏GPI,不能与气单胞菌溶素结合,细胞不会被裂解。基于上述原理,人们研制出荧光素标记气单胞菌溶素前体的变异体( FLAER),该物质能够有与细胞表面GPI结合的能力,却不会导致细胞裂解。因此根据细胞与 FLAER结合与否将GPI正常细胞与GPI缺失的细胞进行识别,从而可以对PNH细胞克隆进行判断。
最新研究表明,FLAER/CD157组合检出的PNH克隆与其他组合检出的克隆大小一致,且具有很高的敏感度和特异性。
1、标本选择。首选EDTA抗凝外周血,不建议采用骨髓标本做检测。因为由于细胞的分化发育会影响GPI相关锚蛋白的表达从而导致结果的较难解释。并且患有MDS的PNH病人结果的解释也比较困难,因为GPI锚蛋白的异常表达跟MDS也相关,尤其CD16的表达。
2、检测时间。冷藏保存7天的标本也可以进行红细胞检测,但建议在24h-48h内进行检测,否则红细胞检测结果的解释将会受到影响。采集标本放置时间越长,白细胞检测影响将会更大,白细胞内颗粒及抗体表达强弱均会受到影响,使得结果难以判断。
3、红细胞检测。红细胞是灵敏度检测最好的目标细胞(细胞多、抗体表达强),但红细胞容易聚集,同时由于溶血和输血的影响,不能完全反映其真实数据,因此需进一步检测白细胞表面GPI相关锚蛋白。
参考文献:吴长有.2014.流式细胞术的基础和临床应用.北京:人民卫生出版社。
流式细胞术(流式细胞仪)。
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